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ISO 17244:2015 水質 — マガキ（Crassostrea gigas）とムラサキイガイ（MytilusedulisまたはMytilusgalloprovincialis）の胚幼生の発育に対する水サンプルの毒性の測定 | ページ 6

※一部、英文及び仏文を自動翻訳した日本語訳を使用しています。

3 用語と定義

このドキュメントでは、次の用語と定義が適用されます。

3.1

EC x

コントロールと比較してx % の効果が期待される (物質の) 計算濃度または (水性サンプルの % での) 希釈

3.2

観察された最低影響濃度

LOEC

統計的に有意な効果が観察される試験サンプルの最低濃度。

3.3

観察された影響濃度なし

NOEC

LOECのすぐ下の試験濃度

[出典: ISO/TS 20281:2006, 3.18]

3.4

基準海水

配偶子の生産を誘導し、テストするソリューションを準備するために使用される天然または合成の海水

3.5

D殻期幼虫

幼虫期:顕微鏡検査下での特徴的な D 字型にちなんで名付けられた

注記1:孵卵後に得られた通常のD型幼虫は完全に発達し,まっすぐな蝶番を持つ対称的な殻を持っている.幼虫のサイズは規則的で、約 70 μm です。固定後、マントルは幼虫の内部をほぼ満たしますが、完全に 2 つの閉じた殻に含まれます。

参考文献

[1]AFNOR XP T90-382, 2009. Qualité de l'eau - Bio indicatorur de la toxicité potentiale de milieux aqueux - Determination de la toxicité potentiale d'échantillons aqueux sur le développement 胚 - 幼虫 de 二枚貝. 19
[2]水および廃水の検査のための標準的な方法。アメリカ公衆衛生協会、ワシントン DC, 第 15 版、1980 年、p. 301
[3]ASTM, 1994 年。4 種の塩水二枚貝の胚から開始する静的急性毒性試験を実施するための標準ガイド。年次標準書、American Society for Testing and Materials, フィラデルフィア、Vol 11.05, pp. 223-24
[4]Beiras R, HIS E Crassostrea gigasカキ幼生の胚形成、生存、成長および変態に対する溶解水銀の影響。 3月エコ。 Prog. Ser. 1994, 113 pp. 95–103.
[5]Chapman PM, Long ER, 海洋汚染評価への包括的なアプローチの一部としてのバイオアッセイの使用。 3月汚染。 Bull. 1983, 14 pp. 81-84.
[6]Damiens G, His E, Gnassia-Barelli M, Quiniou F, Romeo M 自然条件および汚染条件におけるカキの幼生のバイオマーカーの評価。コンプ。生化学。生理。 2004, 138 (パート C) pp. 121–128.
[7]環境庁(英国)カキ (Crassostrea gigas)胚 - 幼生発生試験を使用した水性環境サンプルの直接毒性評価。水および関連資料の検査方法、2007 年。
[8]Geffard O., 2001. Toxicité potentiale dessdiments marins et estuariens contaminés: Evaluation chimique et biologique, biodisponibilité des contaminants sedimentaires.これらのUniv-Bordeaux 1, specialité écotoxicologie, 351
[9]彼の E.、1991 年。Biology and ecotoxicology des véligères de Crassostrea gigas (Thunberg) dans le bassin d'Arcachon. Thesis de docteur d'Etat ès Sciences, Univ. Bordeaux 1, 192 p + vo附属書。
[10]彼の E.、ロバート R.、ル デンジャー デス トレイトメント パー ル スルフェート ドゥ キュイヴル エン ゾーン コンキリコール: トキシシテ ヴィス ア ヴィ デ オフス エ デ ジューンス ラーヴ デC. ギガス. Ｒｅｖ．Ｔｒａｖ．インスティテュート ペシェ マリット。 1982, 42(2) pp. 117–125.
[11]His E.、Heywang I.、Geffard O.、De Montaudoin X.、毒物学的研究のためのカキ ( Crassostrea gigas ) とウニ ( Parcentrotus lividus ) の幼生バイオアッセイの比較。水解像度。 1999, 33 pp. 1706–1718.
[12]His E.、Seaman M.、1993 年。カキ ( Crassostrea gigas ) の幼生および 2 種の単細胞藻類 ( Isochrysis galbanaおよびChaetoceros calcitrans ) に対する 12 の農薬の影響。 Conseil International pour l'Exploration de la Mer, Mar. Envir. Qual. Committee, CM 1993/E: 22, p. 8番目。
[13]彼の E, Seaman MN, Beiras R 水質評価のための二枚貝胚発生幼生発生バイオアッセイ法の単純化。水解像度. 1997, 31 pp. 351-355.
[14]ICES 、国際海洋探査評議会。 2003. 海洋環境に関する ICES 諮問委員会の報告書、2003 年。ICES 共同研究報告書、コペンハーゲン、2003 年 6 月 16 ～ 20 日。
[15]キム SY, リー TY, 1988 年。蒸気発電所から流出する汚染物質が沿岸の二枚貝に及ぼす影響。海洋研究、1, pp. 47-6
[16]Lassus P, Bogé G, Gentien P, Loarer R, Pagano G, Quiniou F, 1990 年。Toxicité des rejets urbain La mer et les rejets urbains, Bendor, 13-15 juin 1990, Actes de colloques 11, pp. 171-185.
[17]LIBRALATO G, LOSSO C, AVEZZU F, VOLPI GHIARDINI A. ムール貝の胚に対する廃水サンプルの毒性に対する塩分調整方法、塩およびブラインの影響。環境技術。 2009 年、30(1) pp.85–9
[18]Lillies FR, 受精に関する研究 アルバシアの受精反応に対する銅塩の効果と水銀効果の比較。 Biol. Bull. 1921, 41 pp. 121-143.
[19]Martin M.、Osborn KE, Billig P.、Glickstein N. Crassostrea gigasおよびMytilus edulis胚、およびCancer magister幼虫に対する 10 種類の金属の毒性。 3月汚染。 Bull. 1981, 12 (9) pp. 305-308.
[20]OSPAR, 北西大西洋の保護のためのオスロおよびパリ条約、北東大西洋の海洋環境の保護のための条約。一般的な生物学的影響のモニタリングに関する JAMP ガイドライン (OSPAR 協定 1997-7) Ref. No: 1997-7. 17
[21]Prytherch HF, 1924) 牡蠣の人工繁殖実験。代表米国コム。フィッシュ、1923年（1924年）、XI, 14
[22]Quiniou F.、Les tests de toxicité。 In: CD-ROM géodrisk – 海事船の水没に伴うリスクの論理的評価.エド。イフレマー、2001年。
[23]Quiniou F.、Alzieu C.、L'analyse des risques chimiques appliquée aux dragages. In: Dragages et environment marin Coord, (Alzieu C., ed.).イフレマー、1999 年、127 ～ 47 ページ。
[24]Quiniou F.、Delesmont R.、Delesmont E.、アプリケーション・デュ・テスト・デュ・デベロップメント・エンブリオネア・ド・バイバルブ・ア・ラ・サーベイランス・デュ・ミリュー・マリン。 25 ans du RNO, ナント、1999 年 10 月。ポスター、1999 年。
[25]Quiniou F.、彼の E.、Delesmont R.、Caisey X.、2005 年。エド。 Ifremer, 海洋環境における分析方法、 24
[26]Quiniou F., Judas A., Le Squer-André E., 1997 - Toxicité potentiales des eaux et des principaux estuaires de la rade de Brest évaluée par deux bioessais - Annales de l'Institut Océanographique. 73 (1), pp. 35-48.
[27]Quiniou F.、Le Squer-André E.、Damee N.、1993 年。 Conseil International pour l'Exploration de la Mer, Mar. Envir. Qual. Committee, 1993/E: 第 25 回セッション。 Q, 11.
[28]Quiniou F.、Toularastel F.、Mesure de l'effet biologique de la qualité d'un millieu par le bio‑essai embarve de bivalve marin. Conseil International pour l'Exploration de la Mer, Mar. Envir. Qual. Committee 1991/E, 26. Ref K, 1991, pp. 8.
[29]SEPAスコットランド環境保護庁、補助ガイダンス (WAT-SG-57) 排出物に対する毒性スクリーニング。 2009年。 12.
[30]Stebbing AR, Akesson DB, Calabrese A, Gentile JH, Jensen A, Lloyd R, 1980 年。海洋汚染モニタリングにおけるバイオアッセイの役割。ラップP.-v レウニ。短所int Explorer, 179, pp 322-33
[31]Thain JE, 1991 年。汚染物質の生物学的影響：カキ ( Crassostrea gigas ) 胚バイオアッセイ。ハイテク3 月。環境。 Sci.、11, 12 pp.、Int Council Explo海、ISSN 0903-260
[32]米国環境保護庁。 1996. 二枚貝急性毒性試験 (胚幼生)生態学的影響試験ガイドライン OPPTS 850.105
[33]米国環境保護庁 - 1995 年。西海岸の海洋および河口生物に対する排水および受水水の慢性毒性を推定するための短期的方法 - パシフィック オイスター、クラソストレア ギガスおよびムール貝、 Mytilus sp.胚-幼生発生試験方法セクション 13 EPA/600/R-95-13 1995 年 8 月。pp.209-25
[34]Walne R. 二枚貝の培養。コンウィでの50年の経験。フィッシング ニュース、書籍: 1974 年、173 ページ。
[35]Woelke CH, 1972. 48 時間のパシフィック カキ ( Crassostrea gigas ) 胚に基づく受入水質バイオアッセイ基準の開発。ワシントン州漁業技術報告書、9 ページ。 93
[36]Zaroogian GE, Pesh G, Morrison G カキの幼生の発育に適した人工海水培地の処方。で。ズール。 1969年、9ページ。 1144
[37]ISO/TS 20281, 水質 - 生態毒性データの統計的解釈に関するガイダンス

3 Terms and definitions

For the purposes of this document, the following terms and definitions apply.

3.1

EC x

calculated concentration (of a substance) or dilution (of an aqueous sample, in %) for which an effect of x % is expected compared to the control

3.2

lowest observed effect concentration

LOEC

lowest concentration of the tested sample at which a statistically significant effect is observed

3.3

no observed effect concentration

NOEC

tested concentration just below the LOEC

[SOURCE: ISO/TS 20281:2006, 3.18]

3.4

reference seawater

natural or synthetic seawater used to induce gamete production and prepare the solutions to be tested

3.5

D-shell stage larvae

larvae stage so named due to their characteristic D-shape under microscopic examination

Note 1 to entry: The normal D larvae obtained after incubation have fully developed and symmetrical shells with a straight hinge. The larvae size is regular and around 70 µm. After fixation, the mantle nearly fills the interior of the larvae, but is totally included within the two closed shells.

Bibliography

[1]AFNOR XP T90-382, 2009. Qualité de l'eau - Bio indicateur de la toxicité potentielle de milieux aqueux - Détermination de la toxicité potentielle d'échantillons aqueux sur le développement embryo-larvaire de bivalve. p. 19.
[2]Standard methods for the examination of waters and wastewaters. American Public Health Association, Washington, D.C., Fifteenth Edition, 1980, p. 301.
[3]ASTM, 1994. Standard guide for conducting static acute toxicity tests starting with embryos of four species of saltwater bivalve molluscs. Annual book of standards, American Society for Testing and Materials, Philadelphia, Vol 11.05, pp. 223-240.
[4]Beiras R.,, HIS E., Effects of dissolved mercury on embryogenesis, survival, growth and metamorphosis of Crassostrea gigas oyster larvae. Mar. Ecol. Prog. Ser. 1994, 113 pp. 95–103.
[5]Chapman P.M., Long E.R., The use of bioassays as part of a comprehensive approach to marine pollution assessment. Mar. Pollut. Bull. 1983, 14 pp. 81–84.
[6]Damiens G., His E., Gnassia-Barelli M., Quiniou F., Roméo M., Evaluation of biomarkers in oyster larvae in natural and polluted conditions. Comp. Biochem. Physiol. 2004, 138 (part C) pp. 121–128.
[7]Environment Agency (UK). The direct toxicity assessment of aqueous environmental samples using the oyster (Crassostrea gigas) embryo-larval development test. Methods for the Examination of Waters and Associated Materials, 2007.
[8]Geffard O., 2001. Toxicité potentielle des sédiments marins et estuariens contaminés: évaluation chimique et biologique, biodisponibilité des contaminants sédimentaires. Thèse Univ-Bordeaux 1, spécialité écotoxicologie, p. 351.
[9]His E., 1991. Biologie et écotoxicologie des véligères de Crassostrea gigas (Thunberg) dans le bassin d’Arcachon. Thèse de docteur d’Etat ès Sciences, Univ. Bordeaux 1, 192 p + vol. annexes.
[10]His E., Robert R., Le danger des traitements par le sulfate de cuivre en zone conchylicole: toxicité vis à vis des oeufs et des jeunes larves de C. gigas. Rev. Trav. Inst. Peche Marit. 1982, 42 (2) pp. 117–125.
[11]His E., Heywang I., Geffard O., De Montaudoin X., A comparison between oyster (Crassostrea gigas) and sea urchin (Paracentrotus lividus) larval bioassay for toxicological studies. Water Res. 1999, 33 pp. 1706–1718.
[12]His E., Seaman M., 1993. Effects of twelve pesticides on larvae of oysters (Crassostrea gigas) and two species of unicellular algae (Isochrysis galbana and Chaetoceros calcitrans). Conseil International pour l’Exploration de la Mer, Mar. Envir. Qual. Committee, CM 1993/E: 22, p. 8.
[13]His E., Seaman M.N., Beiras R., A simplification of the bivalve embryogenesis larval development bioassay method for water quality assessment. Water Res. 1997, 31 pp. 351–355.
[14]ICES, International Council for the Exploration of the Sea. 2003. Report of the ICES Advisory Committee on the Marine Environment, 2003. ICES Cooperative Research Report, Copenhagen, 16‑20 June 2003.
[15]Kim S.Y., Lee T.Y., 1988. The effects of pollutants effluent from a steam-power plant on coastal bivalves. Ocean research, 10 (1), pp. 47-65.
[16]Lassus P., Bogé G., Gentien P., Loarer R., Pagano G., Quiniou F., 1990. Toxicité des rejets urbains. La mer et les rejets urbains, Bendor, 13-15 juin 1990, Actes de colloques 11, pp. 171-185.
[17]LIBRALATO, G., LOSSO, C., AVEZZU, F., VOLPI GHIRARDINI, A. Influence of salinity adjustment methods, salts and brine, on the toxicity of wastewater samples to mussels embryos. Environ. Technol. 2009, 30 (1) pp. 85–91.
[18]Lillies F.R., Studies on fertilization x. The effects of copper salts on the fertilization reaction in Arbacia and a comparison on mercury effects. Biol. Bull. 1921, 41 pp. 121–143.
[19]Martin M., Osborn K.E., Billig P., Glickstein N., Toxicity of ten metals to Crassostrea gigas and Mytilus edulis embryos and Cancer magister larvae. Mar. Pollut. Bull. 1981, 12 (9) pp. 305–308.
[20]OSPAR, Oslo and Paris Convention for the Protection of the North-West Atlantic, Convention for the Protection of the Marine Environment of the North-East Atlantic. JAMP Guidelines for General Biological Effects Monitoring (OSPAR Agreement 1997-7) Ref. No: 1997-7. p. 17.
[21]Prytherch H.F., 1924) Experiments in the artificial propagation of oysters. Rep. U. S. Com. Fish., 1923 (1924), XI, p. 14.
[22]Quiniou F., Les tests de toxicité. In: CD-ROM géodrisk – logiciel d’évaluation des risques liés à l’immersion des déblais de dragage des ports maritimes. Ed. Ifremer, 2001.
[23]Quiniou F., Alzieu C., L'analyse des risques chimiques appliquée aux dragages. In: Dragages et environnement marin Coord, (Alzieu C., ed.). Ifremer, 1999, pp. 127–47.
[24]Quiniou F., Delesmont R., Delesmont E., Application du test du développement embryonnaire de bivalve à la surveillance du milieu marin. 25 ans du RNO, Nantes octobre 1999. Poster, 1999.
[25]Quiniou F., His E., Delesmont R., Caisey X., 2005. Bio-indicateur de la toxicité potentielle de milieux aqueux: bio-essai «développement embryo-larvaire de bivalve». Éd. Ifremer, Méthodes d’analyse en milieu marin, p. 24.
[26]Quiniou F., Judas A., Le Squer-André E., 1997 - Toxicité potentielle des eaux et des sédiments des principaux estuaires de la rade de Brest évaluée par deux bioessais - Annales de l'Institut Océanographique. 73 (1), pp. 35-48.
[27]Quiniou F., Le Squer-André E., Damée N., 1993. Effet de sédiments marins et de leurs extraits aqueux sur la bioluminescence d’une bactérie (Microtox©) et sur le développement embryonnaire de bivalves. Conseil International pour l’Exploration de la Mer, Mar. Envir. Qual. Committee,1993/E: 25. sess. Q, p. 11.
[28]Quiniou F., Toularastel F., Mesure de l’effet biologique de la qualité d’un millieu par le bio‑essai embryon de bivalve marin. Conseil International pour l’Exploration de la Mer, Mar. Envir. Qual. Committee 1991/E, 26. Ref K, 1991, pp. 8.
[29]SEPA Scottish Environment Protection Agency, Supporting Guidance (WAT-SG-57) Toxicity Screenning for discharges. 2009. p. 12.
[30]Stebbing A.R., Akesson D.B., Calabrese A., Gentile J.H., Jensen A., Lloyd R., 1980. The role of bioassays in marine pollution monitoring. Rapp. P.-v Réuni. Cons. int Explor Mer, 179, pp 322-332.
[31]Thain J.E., 1991. Biological effects of contaminants: Oyster (Crassostrea gigas) embryo bioassay. Tech. mar. envirom. Sci., 11, 12 pp., Int Council Explor. Sea, ISSN 0903-2606.
[32]United States Environmental Protection Agency. 1996. Bivalve Acute Toxicity Test (Embryo-Larval). Ecological Effects Test Guidelines OPPTS 850.1055.
[33]United States Environmental Protection Agency – 1995. Short-Term Methods for Estimating the Chronic Toxicity of Effluents and Receiving Waters to West Coast Marine and Estuarine Organisms - Pacific Oyster, Crassostrea gigas and Mussel, Mytilus sp. Embryo-larval Development test method section 13 EPA/600/R-95-136. August 1995. pp. 209-258.
[34]Walne R., Culture of bivalve molluscs. 50 years experience at Conwy. Fishing News, Books: 1974, pp. 173.
[35]Woelke C.H., 1972. Development of a receiving water quality bioassay criterion based on the 48 hours pacific oyster (Crassostrea gigas) embryo. Washington Department of fisheries Technical report, 9 p. 93.
[36]Zaroogian G.E., Pesh G., Morisson G., Formulation of an artificial seawater medium suitable for oyster larvae development. Am. Zool. 1969, 9 p. 1144.
[37]ISO/TS 20281, Water quality — Guidance on statistical interpretation of ecotoxicity data

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