ISO 23266:2020 土壌の質 — 土壌中の汚染物質にさらされたササラダニ(Oppia nitens)の繁殖阻害を測定するためのテスト | ページ 6

※一部、英文及び仏文を自動翻訳した日本語訳を使用しています。

3 用語と定義

この文書の目的上、次の用語と定義が適用されます。

ISO と IEC は、標準化に使用する用語データベースを次のアドレスで維持しています。

3.1

汚染物質

人間の活動の結果として土壌中に存在する物質または作用物質

3.2

効果濃度

EC x

対照と比較した場合に、所定の曝露期間内で所定のエンドポイントに対してx % の影響を引き起こす試験サンプルまたは試験物質の濃度 (質量分率)

例:

EC50 は、定義された曝露期間にわたって曝露された集団の 50% において検査エンドポイントに影響を与えると推定される濃度です。

注記 1: EC x 、土壌混合物 (乾燥質量) 当たりの試験対象の土壌 (乾燥質量) の割合として表されます。物質が試験される場合、EC x 土壌の乾燥質量あたりの試験物質の質量としてミリグラム/キログラムで表されます。

3.3

効果率

HE x

対照と比較した場合に、所定の曝露期間内に所定のエンドポイントに対してx %の影響を引き起こす試験対象の土壌の割合

3.4

致死濃度

LC x

対照と比較した場合に、所定の曝露期間内にx % の死亡率を引き起こす試験サンプルまたは試験物質の濃度(質量分率)

例:

LC50 は、定義された暴露期間にわたって暴露集団の 50% に死亡を引き起こすと推定される濃度です。

注記 1: LC x 、土壌混合物 (乾燥質量) 当たりの試験対象の土壌 (乾燥質量) の割合として表されます。物質を試験する場合、LC x 土壌の乾燥質量あたりの試験物質の質量としてミリグラム/キログラムで表されます。

3.5

限界テスト

少なくとも 5 回の反復からなる単一濃度試験、希釈なし の試験土壌 (3.14) 、または対照土壌と対照土壌に最高濃度の試験物質を混合する。

3.6

観測された最低影響濃度

LOEC

統計的に有意な影響を与える試験サンプルまたは試験物質の最低試験濃度(質量分率)(確率p < 0.05)

注記 1:この試験では、LOEC は、土壌混合物 (乾燥質量) 当たりの試験対象の土壌 (乾燥質量) の割合、または試験対象の土壌の乾燥質量当たりの試験物質の質量として表されます。 LOEC を超えるすべての試験濃度は、通常、対照とは統計的に異なる効果を示すはずです。

3.7

観察された最低効果率

ロアー

統計的に有意な効果が観察される、対照土壌における試験対象の土壌の最低割合

3.8

影響濃度は観察されない

NOEC

影響が観察されない LOEC のすぐ下の試験サンプルまたは試験物質の最高試験濃度 (質量分率)

注記 1:この試験では、NOEC に対応する濃度は、対照と比較した場合、所定の曝露期間内で統計的に有意な影響を及ぼさない (確率p < 0.05)

3.9

効果率は観察されない

ノア

LOER のすぐ下で、対照と比較した場合に、所定の曝露期間内で統計的に有意な影響を及ぼさない (確率p < 0.05) 土壌の最低割合。

3.10

再生

指定された試験条件下で 28 日間孵化した後の試験容器あたりの子孫の平均数

3.11

基準土壌

試験土壌(3.14) と同等の土壌学的特性(栄養素濃度、pH, 有機炭素含有量および質感)を備えた汚染されていない土壌

3.12

標準土壌

主な特性 (pH, 質感、有機物含有量) が既知の範囲内にある野外で収集された土壌または人工土壌

例:

ユーロソイル、人工土、LUFA規格ソイル。

注記 1:標準土壌の特性は、試験土壌の特性と異なる場合があります。

3.13

土壌を管理する

対照として、また有効性基準を満たす試験土壌/サンプルまたは参照物質による希釈系列を調製するための培地として使用される参照または 標準土壌 (3.12)

注記 1:自然土壌の場合、その土壌を最終的な試験で使用する前に、その土壌が試験に適していること、および試験の妥当性基準を達成していることを実証することが望ましい。

3.14

試験土壌

ダニに対する毒性を評価するための、野外で収集した土壌または化学物質を混入した土壌のサンプル

3.15

試験混合物

汚染土壌または試験物質(例:化学薬品、生物固形物、廃棄物)と 対照土壌の混合物(3.13)

注記 1:試験混合物は、土壌乾燥質量に基づく汚染土壌のパーセントで与えられます。

3.16

試験混合比

試験混合物中の試験土壌と対照土壌の比 (3.15)

注記 1:用量反応関係を確立するために、希釈系列に異なる比率を適用することができます。

参考文献

1ISO 15799, 土壌品質 — 土壌および土壌材料の生態毒性学的特性評価に関するガイダンス
2ISO 17616, 土壌品質 — 土壌および土壌材料の生態毒性学的特性評価のためのバイオアッセイの選択と評価に関するガイダンス
3ISO 21285, 土壌品質 — 土壌汚染物質による土壌ダニ (Hypoaspis aculeifer) の繁殖の阻害
4ISO 21286, 土壌品質 — DNA バーコーディングによる生態毒性試験種の特定
5ホフマン D.、シャウスベルガー P.、植物媒介地上-地下相互作用: ハダニの視点。アカロロジー 2012, 52, 17–27 ページ
6Princz JI, Behan-Pelletier VM, Scroggins RP, Siciliano SD, 土壌毒性試験におけるオリバチダニ - 新しい試験種としての Oppia nitens (CL Koch) の使用。環境。有毒。化学 2010, 29, 971–979 ページ
7Lebrun P.、van Straalen NM, Oribatid ダニ:生態毒性学における使用の見通し。経験値応用アカロル 1995, 19, 361-379 ページ
8Behan-Pelletier VM, 農業生態系におけるオリバチダニの生物多様性: 生物学的指標の役割。農業。エコシスト。環境 1999, 74, 411-423ページ
9Gergócs V.、Hufnagel L.、指標としてのハナバチダニの応用: レビュー。 Appl Ecol Environ Res. 2009, 7, 79–98 ページ
10Princz JI, 2014 年。北方土壌の汚染物質を評価するための生態学的関連種の新しいテストスイートの開発 - オリバダニに特に重点を置いています。博士論文。サスカチュワン大学、サスカトゥーン、サスカチュワン州、カナダ
11Huguier P.、Manier N.、Owojori OJ, Bauda P.、Pandard P.、Römbke J.、生態毒性学における土壌ダニの使用: 総説。生態毒性学。 2015, 24, 1–18 ページ
12Princz JI, Moody M.、Fraser C.、van der Vliet L.、Lemieux H.、Scroggins R. 他、北方森林土壌に対する新しい一連の毒性試験の評価: 炭化水素と塩の影響の評価。環境。有毒。化学 2012, 31, 766–777 ページ
13オウォジョリ OJ, シチリアーノ SD, 北方森林生態系における土壌水分による亜鉛毒性の増強。環境。有毒。化学 2015, 34, 600–607 ページ
14環境カナダ。カナダの北方およびタイガのエコゾーンを代表する種および微生物群集を使用した汚染による影響の評価のための毒性試験方法の開発と標準化、技術レポート: 2010 ~ 2013 年。カナダ環境、オンタリオ州オタワ、2013 年、245 p
15環境カナダ。土壌中の汚染物質に曝露されたオリバチ目ダニ Oppia nitens の生存と繁殖を測定するためのテストの研究室間検証に関する報告。土壌毒性研究所が作成した技術報告書。環境と気候変動カナダ、オンタリオ州オタワ、2018 年、56 p
16Owojori OJ, Healey J.、Princz J.、Siciliano SD, ダニ Oppia nitens の回避行動は、金属または有機化学物質で汚染された土壌の迅速毒性試験として使用できますか?環境。有毒。化学 2011, 11, 2594–2601 ページ
17Owojori OJ, Siciliano SD, ハナバチダニ Oppia nitens における金属 (銅、亜鉛、カドミウム、鉛) および有機化合物 (ゲラニオールおよびベンゾ[a] ピレン) の蓄積と毒性。環境。有毒。化学 2012, 31, 1639–1648 ページ
18Jamshidian MK, Verweij RA, van Gestel CAM, van Straalen NM, Oppia nitens Koch (ダニ: Oribatida) におけるカドミウムの毒性動態と時間変動毒性。環境。有毒。化学 2017, 36, 408–413 ページ
19Princz J.、Becker L.、Scheffczyk A.、Stephenson G.、Scroggins R.、Moser T. 他、植物および土壌生物を用いた標準実験室試験におけるホウ酸の生態毒性。生態毒性学 2017, 26, 472–481 ページ
20Lavtizar V, Berggren K, Trebse P, Kraak MHS, Verweij RA, van Gestel CAM, 非対象土壌無脊椎動物に対するクロラントラニリプロールの生態毒性の比較。ケモスフィア 2017, 159, 473–479ページ
21De Lima e Silva C.、Brennan N.、Brouwer JM, Commandeur D.、Verweij RA, van Gestel CAM, さまざまな種の土壌無脊椎動物に対するイミダクロプリドとチアクロプリドの毒性の比較。生態毒性学 2017, 26, 555–564 ページ
22Princz J.、Jatar M.、Lemieux H.、Scroggins R.、表層土壌中のペルフルオロオクタンスルホン酸塩:トビムシ、フォルソミア カンジダ、およびツメダニ、オッピア ニテンスにおける繁殖への影響。ケモスフィア 2018, 208, 757–763 ページ
23Subías LS, 201リストのシステム、社会と生物地理学のロス アカロス オリバチドス (ダニ目、オリバチダ) デル ムンド (化石を除く)、2011 年 2 月更新、561 ペ​​ージ
24カナダ環境省、2019 年:「生物学的試験法:土壌中の汚染物質にさらされたハナダニの繁殖を測定する試験」、方法開発および応用セクション、カナダ環境省、オンタリオ州オタワ、レポート STB 1/RM/61, 2019 年 12 月、138 p
25カナダ環境局、2005 年:「環境毒性試験の統計的手法に関するガイダンス文書」メソッド開発および応用セクション、カナダ環境局、オンタリオ州オタワ、レポート EPS 1/RM/46, 241 p
26Norton RA, Behan-Pelletier VM, Suborder Oribatidにおいて:A Manual of Acarology, (Krantz GW, Walter DE, 編)テキサス工科大学出版局、テキサス州ラボック、第 3 版、2009 年、430 ~ 564 ページ。
27Seniczak S.、いくつかのオッピ科 (ダニ、オリバテイ) の幼若段階の形態 Iペドバイオロギア (イエナ) 1975 年、15 頁 262-275
28Sengbusch HG, Sengbusch CH, Oppia nitens(ダニ:オリバテイ)の胚発生後。 JNYエントム。社会 1970 年、78, 207-214 ページ
29Stefaniak O.、Seniczak S.、オッピア ニテンス (アカリ、オリバテイ) の消化管の微生物叢の発達に対する真菌食の影響。ペドバイオロギア (イエナ) 1981, 21, 202-210 ページ
30Yu L.、Berry RE, Croft BA, トランスジェニックワタおよびジャガイモ中のバチルス・チューリンギエンシス毒素がフォルソミア・カンジダ(トビムシ:イソトミ科)およびオッピア・ニテンス(ダニ:オリバチ科)に及ぼす影響。 J .エントモール 1997, 90, 113-118 ページ
31Seniczak S.、Stefaniak O.、Oppia nitens (Acarina, Oribarei) の消化管の微生物叢。ペドバイオロギア (イエナ) 1978, 18, 110-119 ページ
32Singh M.、Jain KL, Mathur RB, Dogra D.、いくつかの未確認ダニの食物の好みと、土壌中の落葉分解と石灰化におけるそれらの寄与に関する実験室研究。アン。バイオル 1996, 12, 335-343 ページ
33プロクター H.、199ダニ目。 「ダニのような」ダニ。バージョン 1998 年 8 月 9 日。 http://tolweb.org/Acariformes/2563/1998.08.09, The Tree of Life Web プロジェクト、 http://tolweb.org/ 。 2016 年 5 月にアクセス
34ラクストン M.、デンマークのブナ材土壌のオリバチダニに関する研究 I発生生物学ペドバイオロギア (イエナ) 1981, 21, 312-340 ページ
35OECD, 2009 年。土壌におけるトビバラン繁殖試験、化学物質の試験に関するガイドライン、No. 232
36OECD, 2008. 土壌における捕食性ダニ (Hypoaspis (Geolaelaps) aculeifer) 繁殖試験、化学物質試験ガイドライン、No. 226

3 Terms and definitions

For the purposes of this document, the following terms and definitions apply.

ISO and IEC maintain terminological databases for use in standardization at the following addresses:

3.1

contaminant

substance or agent present in the soil as a result of human activity

3.2

effect concentration

ECx

concentration (mass fraction) of a test sample or test substance that causes x % of an effect on a given end-point within a given exposure period when compared with a control

EXAMPLE:

An EC50 is a concentration estimated to cause an effect on a test end-point in 50 % of an exposed population over a defined exposure period.

Note 1 to entry: The ECx is expressed as a percentage of soil to be tested (dry mass) per soil mixture (dry mass). When substances are tested, the ECx is expressed as mass of the test substance per dry mass of soil in milligrams per kilogram.

3.3

effect rate

ERx

rate of a soil to be tested that causes an x % of an effect on a given end-point within a given exposure period when compared with a control

3.4

lethal concentration

LCx

concentration (mass fraction) of a test sample or test substance that causes x % mortality within a given exposure period when compared with a control

EXAMPLE:

An LC50 is a concentration estimated to cause mortality in 50 % of an exposed population over a defined exposure period.

Note 1 to entry: The LCx is expressed as a percentage of soil to be tested (dry mass) per soil mixture (dry mass). When substances are tested, the LCx is expressed as mass of the test substance per dry mass of soil in milligrams per kilogram.

3.5

limit test

single concentration test consisting of at least five replicates each, the test soil (3.14) without any dilution or the highest concentration of test substance mixed into the control soil and the control

3.6

lowest observed effect concentration

LOEC

lowest tested concentration (mass fraction) of a test sample or test substance that has a statistically significant effect (probability p < 0,05)

Note 1 to entry: In this test, the LOEC is expressed as a percentage of soil to be tested (dry mass) per soil mixture (dry mass) or as a mass of test substance per dry mass of the soil to be tested. All test concentrations above the LOEC should usually show an effect that is statistically different from the control.

3.7

lowest observed effect rate

LOER

lowest rate of a soil to be tested in a control soil at which a statistically significant effect is observed

3.8

no observed effect concentration

NOEC

highest tested concentration (mass fraction) of a test sample or test substance immediately below the LOEC at which no effect is observed

Note 1 to entry: In this test, the concentration corresponding to the NOEC, has no statistically significant effect (probability p < 0,05) within a given exposure period when compared with the control.

3.9

no observed effect rate

NOER

lowest rate of a soil to be tested immediately below the LOER which, when compared to the control, has no statistically significant effect (probability p < 0,05) within a given exposure period

3.10

reproduction

mean number of offspring per test vessel after a 28-day incubation under the specified test conditions

3.11

reference soil

uncontaminated soil with comparable pedological properties (nutrient concentrations, pH, organic carbon content and texture) to the test soil (3.14)

3.12

standard soil

field-collected soil or artificial soil whose main properties (pH, texture, organic matter content) are within a known range

EXAMPLE:

Euro soils, artificial soil, LUFA standard soil.

Note 1 to entry: The properties of standard soils can differ from those of the test soil.

3.13

control soil

reference or standard soil (3.12) used as a control and as a medium for preparing dilution series with test soils/samples or a reference substance, which fulfils the validity criteria

Note 1 to entry: In the case of natural soil, it is advisable to demonstrate its suitability for a test and for achieving the test validity criteria before using the soil in a definitive test.

3.14

test soil

sample of field-collected soil or chemical-spiked soil to be evaluated for toxicity to mites

3.15

test mixture

mixture of contaminated soil or the test substance (e.g. chemical, biosolid, waste) with control soil (3.13)

Note 1 to entry: Test mixtures are given in percent of contaminated soil based on soil dry mass.

3.16

test mixture ratio

ratio of test soil to control soil in a test mixture (3.15)

Note 1 to entry: Different ratios may be applied in a dilution series to establish a dose-response relationship.

Bibliography

1ISO 15799, Soil quality — Guidance on the ecotoxicological characterization of soils and soil materials
2ISO 17616, Soil quality — Guidance on the choice and evaluation of bioassays for ecotoxicological characterization of soils and soil materials
3ISO 21285, Soil quality — Inhibition of reproduction of the soil mite (Hypoaspis aculeifer) by soil contaminants
4ISO 21286, Soil quality — Identification of ecotoxicological test species by DNA barcoding
5Hoffmann D., Schausberger P., Plant-mediated aboveground-belowground interactions: the spider mite perspective. Acarology. 2012, 52 pp. 17–27
6Princz J.I., Behan-Pelletier V.M., Scroggins R.P., Siciliano S.D., Oribatid mites in soil toxicity testing – the use of Oppia nitens (C.L. Koch) as a new test species. Environ. Toxicol. Chem. 2010, 29 pp. 971–979
7Lebrun P., van Straalen N.M., Oribatid mites: prospects for their use in ecotoxicology. Exp. Appl. Acarol. 1995, 19 pp. 361–379
8Behan-Pelletier V.M., Oribatid mite biodiversity in agroecosystems: role for bioindication. Agric. Ecosyst. Environ. 1999, 74 pp. 411–423
9Gergócs V., Hufnagel L., Application of oribatid mites as indicators: a review. Appl Ecol Environ Res. 2009, 7 pp. 79–98
10Princz J.I., 2014. Development of a New Test Suite of Ecological-relevant Species for the Assessment of Contaminants in Boreal Soils – Special Emphasis on Oribatid Mites. Ph.D. Dissertation. University of Saskatchewan, Saskatoon, Saskatchewan, Canada
11Huguier P., Manier N., Owojori O.J., Bauda P., Pandard P., Römbke J., The use of soil mites in ecotoxicology: a review. Ecotoxicology. 2015, 24 pp. 1–18
12Princz J.I., Moody M., Fraser C., van der Vliet L., Lemieux H., Scroggins R. et al., Evaluation of a new battery of toxicity tests for boreal forest soil: assessment of the impact of hydrocarbons and salts. Environ. Toxicol. Chem. 2012, 31 pp. 766–777
13Owojori O.J., Siciliano S.D., The potentiation of zinc toxicity by soil moisture in a boreal forest ecosystem. Environ. Toxicol. Chem. 2015, 34 pp. 600–607
14Environment Canada. Development and Standardization of Toxicity Test Methodologies for Assessment of Impacts from Contamination using Species and Microbial Communities Representative of Canadian Boreal and Taiga Eco-Zones, Technical Report: 2010–2013. Environment Canada, Ottawa, Ontario, 2013, 245 p
15Environment Canada. Report on Inter-laboratory Validation of the Test for Measuring Survival and Reproduction of the Oribatid Mite, Oppia nitens, Exposed to Contaminants in Soil. Technical Report prepared by the Soil Toxicology Laboratory. Environment and Climate Change Canada, Ottawa, ON, 2018, 56 p
16Owojori O.J., Healey J., Princz J., Siciliano S.D., Can avoidance behaviour of the mite Oppia nitens be used as a rapid toxicity test for soils contaminated with metals or organic chemicals? Environ. Toxicol. Chem. 2011, 11 pp. 2594–2601
17Owojori O.J., Siciliano S.D., Accumulation and toxicity of metals (copper, zinc, cadmium, and lead) and organic compounds (geraniol and benzo[a]pyrene) in the oribatid mite Oppia nitens. Environ. Toxicol. Chem. 2012, 31 pp. 1639–1648
18Jamshidian M.K., Verweij R.A., van Gestel C.A.M., van Straalen N.M., Toxicokinetics and time‑variable toxicity of cadmium in Oppia nitens Koch (Acari: Oribatida). Environ. Toxicol. Chem. 2017, 36 pp. 408–413
19Princz J., Becker L., Scheffczyk A., Stephenson G., Scroggins R., Moser T. et al., Ecotoxicity of boric acid in standard laboratory tests with plants and soil organisms. Ecotoxicology. 2017, 26 pp. 472–481
20Lavtizar V., Berggren K., Trebse P., Kraak M.H.S., Verweij R.A., van Gestel C.A.M., Comparative ecotoxicity of clorantraniliprole to non-target soil invertebrates. Chemosphere. 2017, 159 pp. 473–479
21De Lima e Silva C.,, Brennan N., Brouwer J.M., Commandeur D., Verweij R.A., van Gestel C.A.M, Comparative toxicity of imidacloprid and thiacloprid to different species of soil invertebrates. Ecotoxicology. 2017, 26 pp. 555–564
22Princz J., Jatar M., Lemieux H., Scroggins R., Perfluorooctane sulfonate in surface soils: effects on reproduction in the collembolan, Folsomia candida and the oribatid mite, Oppia nitens. Chemosphere. 2018, 208 pp. 757–763
23Subías L.S., 2011. Listado sistemático, sinonímico y biogeográfico de los Ácaros Oribátidos (Acariformes, Oribatida) del mundo (excepto fósiles), actualized in February 2011, 561 pp
24Environment Canada, 2019: “Biological Test Method: Test for Measuring Reproduction of Oribatid Mites Exposed to Contaminants in Soil”, Method Development and Application Section, Environment Canada, Ottawa, ON, Report STB 1/RM/61, December 2019, 138 p
25Environment Canada, 2005: “Guidance Document on Statistical Methods for Environmental Toxicity Tests” Method Development and Applications Section, Environment Canada, Ottawa, ON, Report EPS 1/RM/46, 241 p
26Norton R.A., Behan-Pelletier V.M., Suborder Oribatida. In: A Manual of Acarology, (Krantz G.W., Walter D.E., eds.). Texas Tech University Press, Lubbock, Texas, Third Edition, 2009, pp. 430–564.
27Seniczak S., Morphology of juvenile stages of some Oppiidae (Acarina, Oribatei) II. Pedobiologia (Jena). 1975, 15 pp. 262–275
28Sengbusch H.G., Sengbusch C.H., Post-embryonic development of Oppia nitens (Acarina: Oribatei). J. N.Y. Entomol. Soc. 1970, 78 pp. 207–214
29Stefaniak O., Seniczak S., The effect of fungal diet on the development of Oppia nitens (Acari, Oribatei) on the microflora of its alimentary tract. Pedobiologia (Jena). 1981, 21 pp. 202–210
30Yu L., Berry R.E., Croft B.A., Effects of Bacillus thuringiensis toxins in transgenic cotton and potato on Folsomia candida (Collembola: Isotomidae) and Oppia nitens (Acari: Oribatidae). J.Econ. Entomol. 1997, 90 pp. 113–118
31Seniczak S., Stefaniak O., The microflora of the alimentary canal of Oppia nitens (Acarina, Oribatei). Pedobiologia (Jena). 1978, 18 pp. 110–119
32Singh M., Jain K.L., Mathur R.B., Dogra D., Laboratory study of food preferences of some cryptostigmatic mites and their contribution in litter degradation and mineralization in soils. Ann. Biol. 1996, 12 pp. 335–343
33Proctor H., 1998. Acariformes. The"mite-like" mites. Version 09 August 1998. http://tolweb.org/Acariformes/2563/1998.08.09 in The Tree of Life Web Project, http://tolweb.org/ . Accessed May 2016
34Luxton M., Studies on the Oribatid mites of a Danish Beech wood soil IV. Developmental biology.Pedobiologia (Jena). 1981, 21 pp. 312–340
35OECD, 2009. Collembolan Reproduction Test in Soil, Guideline for Testing of Chemicals, No. 232
36OECD, 2008. Predatory Mite (Hypoaspis (Geolaelaps) aculeifer) Reproduction Test in Soil, Guideline for Testing of Chemicals, No. 226