この規格 プレビューページの目次
※一部、英文及び仏文を自動翻訳した日本語訳を使用しています。
3 用語と定義
この文書の目的としては、ISO 16577 および以下に示されている用語と定義が適用されます。
ISO と IEC は、標準化に使用する用語データベースを次のアドレスで維持しています。
3.1
アライメント
配列アラインメント
類似領域に応じた核酸配列またはタンパク質配列の配置
注記 1: アラインメントとは、最大レベルの 同一性を達成するために 2 つ以上の生物学的配列のヌクレオチド残基を一致させるプロセスまたは結果である (3.3) 。
[出典:ISO 16577:2022, 3.7.18, 修正 - 「アライメント」が優先用語として追加されました。エントリに注記 1 を追加しました。]
3.2
ファスタ形式
ヌクレオチド配列またはアミノ酸 (タンパク質) 配列を表すためのテキストベースの形式。ヌクレオチドまたはアミノ酸は 1 文字のコードを使用して表されます。
注記 1: FASTA 形式のシーケンスは 1 行の記述で始まり、その後にシーケンスデータの行が続きます。記述行(defline)は、先頭の大なり記号(“>”)によりシーケンスデータと区別されます。テキストのすべての行の長さを 80 文字未満にすることをお勧めします。
- 小文字は受け入れられ、大文字にマッピングされます。
- 単一のハイフンまたはダッシュを使用して、不定の長さのギャップを表すことができます。
[出典:ISO 16577:2022, 3.1.2, 修正済み — エントリの注 2 の例が置き換えられました。注記 3 の 3 番目のリスト項目が削除されました。]
3.3
身元
2 つの (ヌクレオチドまたはアミノ酸) 配列が アラインメントの同じ位置に同じ残基を持つ程度 (3.1)
注記 1:アイデンティティはパーセンテージで表現されることがよくあります。
注記 2: Barcode of Life (BOLD) の配列データベースでは、同一性の代わりに「類似性」という用語が使用されています。
3.4
遺伝子移入された DNA
ある種の対立遺伝子が別の分岐種の遺伝子プールに組み込まれること
注記 1: 遺伝子移入は、通常、異なる種に属する個体の交雑と戻し交配によって起こります。
3.5
クエリ
データベース内のエントリと比較されるシーケンス (または他の種類の検索語)
3.6
クエリカバレッジ
データベース配列に対する アライメント (3.1) によってカバーされる クエリ (3.5) の割合
参考文献
| 1 | Wolf, C.、Burgener, M.、Hübner, P.、Lüthy, J. ミトコンドリア DNA の PCR-RFLP 分析: 魚種の識別。ライフM.知る。テクノロジー。 2000, 33, 144–150 ページ |
| 2 | Ward, RD, Zemlak, TS, Innes, BH, Last, PR, Hebert, PDN オーストラリアの魚種の DNA バーコーディング。フィロス。トランス。R. Soc.ロンドン。 B サイエンス。 2005, 360, 1847–1857 ページ |
| 3 | Ivanova, NV, Zemlak, TS, Hanner, RH, Hebert, PDN 魚 DNA バーコーディング用のユニバーサル プライマー カクテル。モル。注意事項。 2007, 7 , pp. 544–548 |
| 4 | Cornish-Bowden, A. 核酸配列における不完全に指定された塩基の命名法: 推奨 198Nucleic Acids Res 。 1985, 13 , pp. 3021-3030 |
| 5 | ISO 21571:2005, 食品 — 遺伝子組み換え生物および派生製品の検出のための分析方法 — 核酸抽出 |
| 6 | Schiefenhövel, K.、Rehbein, H. DNA およびタンパク質分析法によるバラマンディ ( Lates calcarifer ) とティラピア ( Oreochromis spp.) の切り身の同定。 J. 命の消費。 2011, 6 , pp. 203–214 |
| 7 | ISO 22949-1:2021, 分子バイオマーカー分析 — 食品および飼料製品中の動物種の検出および同定のための分析方法 (ヌクレオチド配列ベースの方法) — Part 1: 一般要件 |
| 8 | セビージャ、RG, ディエス、A.、ノレン、M.、ムシェル、O.、ジェローム、M.、ベレス・バグニス、V. 他FishTrace Consertium および Bautista, JM: ミトコンドリアのシトクロム b および核ロドプシン遺伝子に基づく DNA バーコーディング硬骨魚類のプライマーおよびポリメラーゼ連鎖反応条件。モル。注意事項。 2007, 7, 730–734 ページ |
| 9 | レレイ M, ヤン JY, マイヤー CP, ミリス SC, アグデロ N, ランウェズ V 他後生動物の多様性をメタバーコーディングするためのミトコンドリア COI 領域の短いフラグメントをターゲットとする新しい汎用性の高いプライマー セット: サンゴ礁の魚の腸内容物を特徴付けるためのアプリケーション。フロント。動物園。 2013, 10 、p. 34 |
| 10 | Pardo, BG, Machordom, A.、Foresti, F.、Porto-Foresti, F.、Azevedo, MFC, Banon, R. 他ミトコンドリア 16S rDNA 配列に基づくカレイ ( Pleuronectiformes目) の系統解析。科学。 3月 2005, 69, 531–543 ページ |
| 11 | Matthes, N.、Pietsch, K.、Rullmann, A.、Näumann, G.、Pöpping, B.、Szabo, K. DNA バーコーディングを使用して動物種を識別するための適切な方法を選択するための新しいツール。分子生物学レポート。 2020, 47, 6457–6461 ページ。入手先: doi: 10.1007/s11033-020-05675-1 |
| 12 | Altschul, SF, Gish, W.、Miller, W.、Myers, EW, Lipman, DJ 基本的なローカル アライメント検索ツール。 J.Mol.1990、215 、 pp . |
| 13 | Ratnasingham, S.、Hebert, PDN 太字: 生命データ システムのバーコード。モル。注意事項。 2007, 7, 355–364 ページ。以下から入手可能: www.barcodinglife.org |
| 14 | Benson DA, Cavanaugh M, Clark K, Karsch-Mizrachi I, Lipman DJ, Ostell J, Sayers EW GenBan核酸研究 Res . 2018, 46 (D1):D41-D4入手可能場所: doi: 10.1093/nar/gkx1094 |
| 15 | F ROESE, R.、 PAULY, D. 編2023.フィッシュベース。ワールドワイドウェブの電子出版。入手可能場所: www.fishbase.org 、バージョン (2023 年 6 月) [2023 年 10 月 6 日閲覧] |
| 16 | BOLD システム、BOLD 識別エンジン、[2023 年 3 月 3 日閲覧以下から入手可能: https://www.boldsystems.org/ |
| 17 | Vinas, J.、Tudela, S. マグロ種 ( Thunnus属) の遺伝的同定のための検証された方法論。 PLoSOne 。 2009, 4 , p. e7606 |
| 18 | Harrison, RG, Larson, EL 交雑、遺伝子移入、および種の境界の性質。 J. ヘレッド 2014, 105, 795–809 ページ |
| 19 | Aquagene – 魚種の厳選された遺伝参照データベース、[2023 年 10 月 6 日閲覧から入手可能: https://www.aquagene.org/ |
| 20 | デルリュー・トロッティンE, ウィリアムズJT, ピタシーD, ディリスクセルA, フーバートN, ヴィヴィアーニJ, 他DNA バーコードは、フランス領ポリネシアの海岸魚のライブラリ http://fishbardb.criobe.pf/ を参照してください。サイデータ。 201, 6, (1)、p. 114, 次から入手可能: doi: 10.1038/s41597-019-0123-入手先: [2023 年 10 月 6 日閲覧 |
| 21 | Knebelsberger, T.、Dunz, AR, Neumann, D.、Geiger, M. DNA バーコーディングによって評価されたドイツの淡水魚とヤツメウナギの分子多様性。モル。リソース。 2015, 15 , pp. 562–572 |
| 22 | Hoelzel, アーカンソー州集団の分子遺伝学的分析。オックスフォード大学出版局、オックスフォード、1992 年 |
| 23 | ラベルフィッシュ共同体he DNA バーコーディングを使用した魚種の遺伝的識別のための標準操作手順、[2023 年 8 月 31 日閲覧以下から入手可能: https://www.seatraces.eu/sop/ |
| 24 | Hanner, R.、Becker, S.、Ivanova, NV, Steinke, D. FISH-BOL と魚介類の識別: 地理的に分散したケーススタディにより、カナダ全土の体系的な市場代替が明らかになりました。ミトコンドリア DNA 。 2011, 22 , pp. 106–122 |
| 25 | Pedrosa-Gerasmio, IR, Babaran, RP, Santos MD ミトコンドリア DNA 制御領域と肝臓形態を用いたキハダ ( Thunnus albacares ) とメバチ ( T. obesus ) マグロの幼魚の識別。プロスワン。 2012, 7 , p. e35604 |
| 26 | Santini, F.、Carnevale, G.、Sorenson, L. 最初の分子スクムブリッド タイムツリー ( Percomorpha: Scombridae ) は、遠洋生息地への侵入後のマグロの最近の放散を示しています。イタリア動物学ジャーナル。 2013, 80 , pp. 210–221 |
| 27 | ISO 16577:2022, 分子バイオマーカー分析 — 農業および食品生産における分子バイオマーカー分析方法の語彙 |
3 Terms and definitions
For the purposes of this document, the terms and definitions given in ISO 16577 and the following apply.
ISO and IEC maintain terminology databases for use in standardization at the following addresses:
3.1
alignment
sequence alignment
arrangement of nucleic acid sequences or protein sequences according to regions of similarity
Note 1 to entry: Alignment is a process or result of matching up the nucleotide residues of two or more biological sequences to achieve maximal levels of identity (3.3) .
[SOURCE:ISO 16577:2022, 3.7.18, modified — “alignment” was added as the preferred term; Note 1 to entry was added.]
3.2
FASTA format
text-based format for representing either nucleotide sequences or amino acid (protein) sequences, in which nucleotides or amino acids are represented using single-letter codes
Note 1 to entry: A sequence in FASTA format begins with a single-line description, followed by lines of sequence data. The description line (defline) is distinguished from the sequence data by a greater-than (“>”) symbol at the beginning. It is recommended that all lines of text be shorter than 80 characters in length.
- lower-case letters are accepted and are mapped into upper-case;
- a single hyphen or dash can be used to represent a gap of indeterminate length.
[SOURCE:ISO 16577:2022, 3.1.2, modified — Example in Note 2 to entry was replaced; the third list item in Note 3 to entry was deleted.]
3.3
identity
extent to which two (nucleotide or amino acid) sequences have the same residues at the same positions in an alignment (3.1)
Note 1 to entry: Identity is often expressed as a percentage.
Note 2 to entry: In the sequence database of the Barcode of Life (BOLD), the term"similarity" is used instead of identity.
3.4
introgressed DNA
allele from one species incorporated in the gene pool of another, divergent species
Note 1 to entry: Introgression has usually happened via hybridization and backcrossing of individuals belonging to different species.
3.5
query
sequence (or other type of search term) that is compared to entries in a database
3.6
query coverage
percentage of the query (3.5) covered by alignment (3.1) to the database sequence
Bibliography
| 1 | Wolf, C., Burgener, M., Hübner, P., Lüthy, J. PCR-RFLP analysis of mitochondrial DNA: differentiation of fish species. Lebensm. Wiss. Technol. 2000, 33 , pp. 144–150 |
| 2 | Ward, R. D., Zemlak, T. S., Innes, B. H., Last, P. R., Hebert, P. D. N. DNA barcoding Australia’s fish species. Philos. Trans. R. Soc. Lond. B Biol. Sci. 2005, 360 , pp. 1847–1857 |
| 3 | Ivanova, N. V., Zemlak, T. S., Hanner, R. H., Hebert, P. D. N. Universal primer cocktails for fish DNA barcoding. Mol. Ecol. Notes. 2007, 7 , pp. 544– 548 |
| 4 | Cornish-Bowden, A. Nomenclature for incompletely specified bases in nucleic acid sequences: recommendations 1984. Nucleic Acids Res. 1985, 13 , pp. 3021–3030 |
| 5 | ISO 21571:2005, Foodstuffs — Methods of analysis for the detection of genetically modified organisms and derived products — Nucleic acid extraction |
| 6 | Schiefenhövel, K., Rehbein, H. Identification of barramundi (Lates calcarifer) and tilapia (Oreochromis spp.) fillets by DNA- and protein-analytical methods. J. Verbr. Lebensm. 2011, 6 , pp. 203–214 |
| 7 | ISO 22949-1:2021, Molecular biomarker analysis — Methods of analysis for the detection and identification of animal species in food and feed products (nucleotide sequencing-based methods) — Part 1: General requirements |
| 8 | Sevilla, R. G., Diez, A., Norén, M., Mouchel, O., Jérôme, M., Verrez-Bagnis, V. et al. The FishTrace Consertium and Bautista, J.M.: Primers and polymerase chain reaction conditions for DNA barcoding teleost fish based on the mitochondrial cytochrome b and nuclear rhodopsin genes. Mol. Ecol. Notes. 2007, 7, pp. 730–734 |
| 9 | Leray, M., Yang, J. Y., Meyer, C. P., Millis, S. C., Agudelo, N., Ranwez, V. et al. A new versatile primer set targeting a short fragment of the mitochondrial COI region for metabarcoding metazoan diversity: application for characterizing coral reef fish gut contents. Front. Zool. 2013, 10 , p. 34 |
| 10 | Pardo, B. G., Machordom, A., Foresti, F., Porto-Foresti, F., Azevedo, M. F. C., Banon, R. et al. Phylogenetic analysis of flatfish (Order Pleuronectiformes) based on mitochondrial 16S rDNA sequences. Sci. Mar. 2005, 69, pp. 531–543 |
| 11 | Matthes, N., Pietsch, K., Rullmann, A., Näumann, G., Pöpping, B., Szabo, K. A new tool to select appropriate methods for animal species identification using DNA barcoding. Molecular Biology Reports. 2020, 47 , pp. 6457–6461. Available from: doi: 10.1007/s11033-020-05675-1 |
| 12 | Altschul, S. F., Gish, W., Miller, W., Myers, E. W., Lipman, D. J. Basic local alignment search tool. J. Mol. Biol. 1990, 215 , pp. 403–410 |
| 13 | Ratnasingham, S., Hebert, P. D. N. BOLD: The Barcode of Life Data System. Mol. Ecol. Notes. 2007, 7 , pp. 355–364. Available from: www.barcodinglife.org |
| 14 | Benson, D. A., Cavanaugh, M., Clark, K., Karsch-Mizrachi, I., Lipman, D. J., Ostell, J., Sayers, E. W. GenBank. Nucleic Acids research Res. 2018, 46 (D1):D41-D47. Available from: doi: 10.1093/nar/gkx1094 |
| 15 | FROESE, R., PAULY, D., eds. 2023. FishBase. World Wide Web electronic publication. Available from: www.fishbase.org , version (06/2023) [viewed 06 October 2023] |
| 16 | BOLD systems, BOLD Identification Engine, [viewed 03 March 2023]. Available from: https://www.boldsystems.org/ |
| 17 | Vinas, J., Tudela, S. A validated methodology for genetic identification of tuna species (Genus Thunnus). PLoS One. 2009, 4 , p. e7606 |
| 18 | Harrison, R. G., Larson, E. L. Hybridization, Introgression, and the Nature of Species Boundaries. J. Hered. 2014, 105 , pp. 795–809 |
| 19 | Aquagene – the curated genetic reference database for fish species, [viewed 06 October 2023]. Available from: https://www.aquagene.org/ |
| 20 | Delrieu-Trottin E., Williams J.T., Pitassy D., Driskell A., Hubert N., Viviani J. Et Al. A Dna barcode refer http://fishbardb.criobe.pf/ ence library of French Polynesian shore fishes. Sci Data. 201, 6(1), p. 114, Available from: doi: 10.1038/s41597-019-0123-5. Available from: [viewed 06 October 2023]. |
| 21 | Knebelsberger, T., Dunz, A. R., Neumann, D., Geiger, M. Molecular diversity of Germany’s freshwater fishes and lampreys assessed by DNA barcoding. Mol. Ecol. Resour. 2015, 15 , pp. 562–572 |
| 22 | Hoelzel, A. R. Molecular genetic analyses of population. Oxford University Press, Oxford, 1992 |
| 23 | The Labelfish Consortium. Standard Operating Procedure for the Genetic Identification of Fish Species Using DNA Barcoding, [viewed on 31 August 2023]. Available from: https://www.seatraces.eu/sop/ |
| 24 | Hanner, R., Becker, S., Ivanova, N.V., Steinke, D. FISH-BOL and seafood identification: Geographically dispersed case studies reveal systemic market substitution across Canada. Mitochondrial DNA. 2011, 22 , pp. 106–122 |
| 25 | Pedrosa-Gerasmio, I. R., Babaran, R. P., Santos M. D. Discrimination of Juvenile Yellowfin (Thunnus albacares) and Bigeye (T. obesus) Tunas using Mitochondrial DNA Control Region and Liver Morphology. PloS One. 2012, 7 , p. e35604 |
| 26 | Santini, F., Carnevale, G., Sorenson, L. First molecular scombrid timetree (Percomorpha: Scombridae) shows recent radiation of tunas following invasion of pelagic habitat. Italian Journal of Zoology. 2013, 80 , pp. 210–221 |
| 27 | ISO 16577:2022, Molecular biomarker analysis — Vocabulary for molecular biomarker analytical methods in agriculture and food production |