この規格 プレビューページの目次
※一部、英文及び仏文を自動翻訳した日本語訳を使用しています。
3 用語と定義
この文書の目的のために、ISO 20838, ISO 22119, ISO 22174 および以下に示されている用語と定義が適用されます。
ISO と IEC は、標準化に使用する用語データベースを次のアドレスで維持しています。
3.1
食品
食品として使用される、または食品として使用するために調製された物質
注記 1:この文書の目的上、この定義にはボトル入り飲料水が含まれます。
3.2
表面
食品の表面、食品の調理面、または食品との接触面
3.3
柔らかい果物
小さな食用の石のない果物
例:
イチゴ、ラズベリー、スグリ。
3.4
葉、茎、球根の野菜
野菜として食べられる植物の葉、茎、球根
例:
レタス、ネギ。
3.5
A型肝炎ウイルス
HAV
感染性肝炎の原因となるピコルナウイルス科のメンバー
注記 1: 遺伝学的には、HAV は VP1/2A 領域に基づいて 6 つの遺伝子型に細分することができる (遺伝子型 1, 2 および 3 はヒトで見つかっており、遺伝子型 4, 5 および 6 はサル起源のものである)血清型は 1 つだけです。
注記 2:感染は、汚染された 食品の摂取 (3.1) 、汚染された水や 表面との接触 (3.2) 、または汚染された媒介物との接触を通じて、人から人への接触による糞口経路を介して起こります。 HAV は、欧州連合によってグループ 2 の生物因子として分類され、米国国立衛生研究所によってリスク グループ 2 のヒト病原体として分類されています。
3.6
ノロウイルス
散発的な症例と急性胃腸炎の発生の原因となるカリシウイルス科のメンバー
注記 1: 遺伝学的には、ノロウイルスは 7 つの別個の遺伝子グループにさらに分類できます。これらの遺伝子群のうち GI, GII, GIV の 3 つがヒトの胃腸疾患に関与していると考えられています。 GI と GII は臨床症例の大部分を担っています。
注記 2:感染は、人から人への接触、汚染された 食品の摂取 (3.1) 、汚染された水や 表面との接触 (3.2) 、または汚染された嘔吐物との接触による糞口経路を介して起こります。 GI および GII ノロウイルスは、欧州連合によってグループ 2 の生物学的病原体として分類され、米国国立衛生研究所によってリスク グループ 2 のヒト病原体として分類されています。
3.7
HAVの検出
HAV (3.5) 食品の所定の質量または体積 (3.1) 、または 表面領域 (3.2) 内の RNA の検出
3.8
ノロウイルスの検出
ノロウイルスの検出 (3.6) 所定の質量または体積の 食品 (3.1) 、または 表面領域 (3.2) 内の RNA の検出
3.9
プロセス制御ウイルス
抽出効率を制御するために、ウイルス抽出前のできるだけ早い機会にサンプル部分にウイルスを追加します。
3.10
プロセスコントロールウイルスRNA
抽出効率を推定するための標準曲線データを作成するために、 プロセス コントロール ウイルス (3.9) から抽出された RNA
3.11
ネガティブRNA抽出コントロール
汚染事象を監視するために、RNA 抽出および検出手順のすべてのステップを通じてターゲット RNA を含まないコントロールを実施
3.12
ネガティブプロセスコントロール
分析プロセスのすべての段階で実行される、食品マトリックスの標的病原体を含まないサンプル、または標的病原体を含まない非マトリックスサンプル
3.13
加水分解サンプル
蛍光レポーター分子およびクエンチャー分子と結合した蛍光プローブ。これらは増幅プロセス中に酵素の5'-3'-エキソヌクレアーゼ活性によって立体的に分離されます。
3.14
ネガティブリアルタイム RT-PCR コントロール
リアルタイム RT-PCR 試薬の汚染を評価するためにリアルタイム RT-PCR 反応に使用される高純度水のアリコート
3.15
外部コントロールRNA
EC RNA
別の反応でサンプル RNA のアリコートに規定量を添加することにより、関連するリアルタイム RT-PCR アッセイの増幅の阻害を評価するために使用できる参照 RNA
例:
標的遺伝子のコピーを保持するプラスミドからのin vitro転写によって合成された RN
3.16
C q 値
定量サイクル。特定のリアルタイム RT-PCR 反応でターゲットが定量されるサイクルです。
注記 1:これは、反応蛍光が閾値レベルを超えて上昇するサイクルに対応します。
参考文献
| 1 | ISO 7218, 食品および動物飼料の微生物学 — 微生物学的検査の一般要件とガイダンス |
| 2 | ISO 15216-1, 食物連鎖の微生物学 — リアルタイム RT-PCR を使用した A 型肝炎ウイルスおよびノロウイルスの水平的定量法 — Part 1: 定量法 |
| 3 | ISO 17468, 食物連鎖の微生物学 - 標準化された参照方法の確立または改訂に関する技術要件およびガイダンス |
| 4 | Boom R.、Sol CJ, Salimans MM, Jansen CL, Wertheim-van Dillen PM, van der Noordaa J.、核酸の迅速かつ簡単な精製方法。 J.クリン.微生物。 1990, 28, pp.495-503 |
| 5 | Costafreda MI, Bosch A, Pintó RM, 臨床サンプルおよび貝類サンプル中の A 型肝炎ウイルスを定量するためのリアルタイム TaqMan 逆転写 PCR アッセイの開発、評価、および標準化。応用環境。微生物。 2006, 72, 3846–3855 ページ |
| 6 | da Silva AK, Le Saux JC, Parnaudeau S.、Pommepuy M.、Elimelech M.、Le Guyader FS, リアルタイム逆転写 PCR を使用した廃水処理中のノロウイルス除去の評価: 遺伝子グループ I と II の異なる挙動。応用環境。微生物。 2007, 73, 7891–7897 ページ |
| 7 | Svraka S.、Duizer E.、Vennema H.、de Bruin E.、van der Veer B.、Dorresteijn B. 他、1994 年から 2005 年にかけてオランダで発生した急性胃腸炎におけるウイルスの病因学的役割。J . Clin微生物。 2007, 45, 1389–1394 ページ |
| 8 | Hoehne M.、Schreier E.、3' マイナー グルーブ バインダー DNA プローブを使用したマルチプレックス リアルタイム RT-PCR によるノロウイルス ジェノグループ I および II の検出。 BM感染する。ディス。 2006年、6時69分 |
| 9 | Loisy F.、Atmar RL, Guillon P.、Le Cann P.、Pommepuy M.、Le Guyader FS, 貝類のノロウイルス スクリーニングのためのリアルタイム RT-PC J.Virol.メソッド。 2005, 123, 1–7 ページ |
| 10 | Kageyama T.、Kojima S.、Shinohara M.、uchida K.、Fukushi S.、Hono FB et al.、リアルタイム定量的逆転写 PCR に基づくノーウォーク様ウイルスの広範な反応性と高感度アッセイ。 J.クリン.微生物。 2003, 41, 1548–1557 ページ |
| 11 | Le Guyader FS, Parnaudeau S.、Schaeffer J.、Bosch A.、Loisy F.、Pommepuy M. 他、貝類中のノロウイルスの検出と定量。応用環境。微生物。 2009, 75, 618–624 ページ |
| 12 | Pintó RM, Costafreda MI, Bosch A.、貝類による A 型肝炎の発生におけるリスク評価。環境。微生物。 2009, 75, 7350–7355 ページ |
| 13 | Martin LR, Duke GM, Osorio JE, Hall DJ, Palmenberg AC, メンゴウイルスのポリ (C) トラクトおよび周囲のヘテロポリマー配列の変異解析。 J.ヴィロル1996, 70, 2027-2031 ページ |
| 14 | Lowther JA, Bosch A, Butot S, Ollivier J, Mäde D, Rutjes SA, Hardouin G, Lombard B, In't, Veld P, Leclecq A, ISO メソッド 15216 の検証 - Part 1 – A 型肝炎ウイルスとノロウイルスの定量食品マトリックスにおいて。内部。 J. 食品微生物。 2019, 288, 82–90ページ |
| 15 | Wilrich C, Wilrich PT, 微生物学的定性測定法の POD 関数と LOD の推定。 AOACインターナショナル。 2009, 92, 1763–1772 ページ |
3 Terms and definitions
For the purposes of this document, the terms and definitions given in ISO 20838, ISO 22119, ISO 22174 and the following apply.
ISO and IEC maintain terminological databases for use in standardization at the following addresses:
3.1
foodstuff
substance used or prepared for use as food
Note 1 to entry: For the purposes of this document, this definition includes bottled water.
3.2
surface
surface of food, food preparation surface or food contact surface
3.3
soft fruit
small edible stoneless fruit
EXAMPLE:
Strawberries, raspberries, currants.
3.4
leaf, stem and bulb vegetables
leaves, stems and bulbs of plants, eaten as a vegetable
EXAMPLE:
Lettuce, green onions.
3.5
hepatitis A virus
HAV
member of the Picornaviridae family responsible for infectious hepatitis
Note 1 to entry: Genetically, HAV can be subdivided into six genotypes on the basis of the VP1/2A region (genotypes 1, 2 and 3 have been found in humans, while genotypes 4, 5, and 6 are of simian origin). There is only one serotype.
Note 2 to entry: Transmission occurs via the faecal-oral route by person-to-person contact, through the consumption of contaminated foodstuffs (3.1) , contact with contaminated water or surfaces (3.2) , or contact with contaminated fomites. HAV is classified as a group 2 biological agent by the European Union and as a risk group 2 human aetiological agent by the United States National Institutes of Health.
3.6
norovirus
member of the Caliciviridae family responsible for sporadic cases and outbreaks of acute gastroenteritis
Note 1 to entry: Genetically, norovirus can be subdivided into seven separate genogroups. Three of these genogroups, GI, GII and GIV have been implicated in human gastrointestinal disease. GI and GII are responsible for the vast majority of clinical cases.
Note 2 to entry: Transmission occurs via the faecal-oral route by person-to-person contact, through the consumption of contaminated foodstuffs (3.1) , through contact with contaminated water or surfaces (3.2) , or contact with contaminated fomites. GI and GII noroviruses are classified as group 2 biological agents by the European Union and as risk group 2 human aetiological agents by the United States National Institutes of Health.
3.7
detection of HAV
detection of HAV (3.5) RNA in a predetermined mass or volume of foodstuff (3.1) , or on the area of a surface (3.2)
3.8
detection of norovirus
detection of norovirus (3.6) RNA in a predetermined mass or volume of foodstuff (3.1) , or on the area of a surface (3.2)
3.9
process control virus
virus added to the sample portion at the earliest opportunity prior to virus extraction to control for extraction efficiency
3.10
process control virus RNA
RNA extracted from the process control virus (3.9) in order to produce standard curve data for the estimation of extraction efficiency
3.11
negative RNA extraction control
control free of target RNA carried through all steps of the RNA extraction and detection procedure to monitor any contamination events
3.12
negative process control
target pathogen-free sample of the food matrix, or target pathogen-free non-matrix sample, that is run through all stages of the analytical process
3.13
hydrolysis probe
fluorescent probe coupled with a fluorescent reporter molecule and a quencher molecule, which are sterically separated by the 5′-3′-exonuclease activity of the enzyme during the amplification process
3.14
negative real-time RT-PCR control
aliquot of highly pure water used in a real-time RT-PCR reaction to assess contamination in the real-time RT-PCR reagents
3.15
external control RNA
EC RNA
reference RNA that can be used to assess inhibition of amplification for the real-time RT-PCR assay of relevance by being added in a defined amount to an aliquot of sample RNA in a separate reaction
EXAMPLE:
RNA synthesized by in vitro transcription from a plasmid carrying a copy of the target gene.
3.16
Cq value
quantification cycle, which is the cycle at which the target is quantified in a given real-time RT-PCR reaction
Note 1 to entry: This corresponds to the cycle at which reaction fluorescence rises above a threshold level.
Bibliography
| 1 | ISO 7218, Microbiology of food and animal feeding stuffs — General requirements and guidance for microbiological examinations |
| 2 | ISO 15216-1, Microbiology of the food chain — Horizontal method for determination of hepatitis A virus and norovirus using real-time RT-PCR — Part 1: Method for quantification |
| 3 | ISO 17468, Microbiology of the food chain — Technical requirements and guidance on establishment or revision of a standardized reference method |
| 4 | Boom R., Sol C.J., Salimans M.M., Jansen C.L., Wertheim-van Dillen P.M., van der Noordaa J., Rapid and simple method for purification of nucleic acids. J. Clin. Microbiol. 1990, 28, pp. 495–503 |
| 5 | Costafreda M.I., Bosch A., Pintó R.M., Development, evaluation, and standardization of a real-time TaqMan reverse transcription-PCR assay for quantification of hepatitis A virus in clinical and shellfish samples. Appl. Environ. Microbiol. 2006, 72, pp. 3846–3855 |
| 6 | da Silva A.K., Le Saux J.C., Parnaudeau S., Pommepuy M., Elimelech M., Le Guyader F.S., Evaluation of removal of noroviruses during wastewater treatment, using real-time reverse transcription-PCR: Different behaviors of genogroups I and II. Appl. Environ. Microbiol. 2007, 73, pp. 7891–7897 |
| 7 | Svraka S., Duizer E., Vennema H., de Bruin E., van der Veer B., Dorresteijn B. et al., Etiological role of viruses in outbreaks of acute gastroenteritis in The Netherlands from 1994 through 2005. J. Clin. Microbiol. 2007, 45, pp. 1389–1394 |
| 8 | Hoehne M., Schreier E., Detection of Norovirus genogroup I and II by multiplex real-time RT-PCR using a 3′-minor groove binder-DNA probe. BMC. Infect. Dis. 2006, 6:69 |
| 9 | Loisy F., Atmar R.L., Guillon P., Le Cann P., Pommepuy M., Le Guyader F.S., Real-time RT-PCR for norovirus screening in shellfish. J. Virol. Methods. 2005, 123, pp. 1–7 |
| 10 | Kageyama T., Kojima S., Shinohara M., Uchida K., Fukushi S., Hoshino F.B. et al., Broadly reactive and highly sensitive assay for Norwalk-like viruses based on real-time quantitative reverse transcription-PCR. J. Clin. Microbiol. 2003, 41, pp. 1548–1557 |
| 11 | Le Guyader F.S., Parnaudeau S., Schaeffer J., Bosch A., Loisy F., Pommepuy M. et al., Detection and quantification of noroviruses in shellfish. Appl. Environ. Microbiol. 2009, 75, pp. 618–624 |
| 12 | Pintó R.M., Costafreda M.I., Bosch A., Risk assessment in shellfish-borne outbreaks of hepatitis A. Appl. Environ. Microbiol. 2009, 75, pp. 7350–7355 |
| 13 | Martin L.R., Duke G.M., Osorio J.E., Hall D.J., Palmenberg A.C., Mutational analysis of the mengovirus poly(C) tract and surrounding heteropolymeric sequences. J. Virol. 1996, 70, pp. 2027–2031 |
| 14 | Lowther J.A., Bosch A, Butot S, Ollivier J, Mäde D, Rutjes S.A, Hardouin G, Lombard B, In’t, Veld P, Leclercq A, Validation of ISO method 15216 - Part 1 – Quantification of hepatitis A virus and norovirus in food matrices. Int. J. Food Microbiol. 2019, 288, pp 82–90 |
| 15 | Wilrich C, Wilrich P.T, Estimation of the POD function and the LOD of a qualitative microbiological measurement method. AOAC International. 2009, 92, pp. 1763–1772 |